Conocer los principios que regulan la producción es fundamental para el manejo del recurso forrajero.

Conocer los principios que regulan la producción de estas plantas es importante porque ellos no sólo determinan el manejo del recurso forrajero, sino que también afectan directamente a la productividad secundaria (producción de carne, leche, cueros, etc.), siendo aplicables a distintos sistemas de producción de forraje como pastizales, pasturas, o verdeos.

Desarrollo y crecimiento

Como en el caso de los cultivos agrícolas, la región en la cual se puede realizar la siembra de una especie está condicionada fundamentalmente por los dos grandes reguladores del crecimiento y el desarrollo de las plantas: la temperatura y el fotoperíodo (duración del día).

Si bien otros factores, como por ejemplo la disponibilidad hídrica, los nutrientes presentes en el suelo, la calidad de luz, o la vía de fijación del carbono (metabolismo carbono 3, C3; carbono 4, C4 y crasuláceas, CAM), también modifican la composición en un stand de plantas y su calidad alimentaria. Son los primeros dos, los factores de mayor influencia en el desarrollo y el crecimiento de las plantas.

Metabolismo

En cuanto al tipo de metabolismo, es a partir del balance entre el CO2 fijado en la fotosíntesis y la respiración que las plantas crecen y modifican su forma y desarrollo.

En el caso de las especies tipo C4 la fijación en tejidos especiales, que se traduce en una mayor área foliar generada y en una mayor eficiencia en el uso de la radiación, les confiere características más favorables para crecer en ambientes con alta temperatura y luminosidad, o con una menor oferta de nitrógeno (son más eficientes en el uso del nitrógeno).

Las C4 son más eficientes para crecer en climas subtropicales y tropicales, aquí las podemos encontrar en pasturas “megatérmicas” y en los pastizales naturales (Brachiaria, Setaria, Gatton panic, Grama Rhodes, Pasto Pangola, Pasto macho, Sorghastrum, Pasto miel, Pasto alambre, etc).

Presentan una desventaja en términos de calidad forrajera ya que traen aparejada una menor digestibilidad del forraje.

El rebrote

El comportamiento post defoliación difiere entre especies que forman matas como en muchas gramíneas (Setaria) y aquellas que colonizan nuevos espacios libres a partir de estolones o guías (Grama Rhodes y Trébol blanco), o las que rebrotan a partir de yemas ubicadas en estructuras denominadas “corona” como por ejemplo la Alfalfa.

¿Qué pasa con el pastoreo?

Existen grupos de forrajeras que presentan mecanismos de resistencia para reducir el pastoreo, estas características morfológicas pueden ser por ejemplo: la presencia de tejidos duros o engrosados, presencia de ceras en la superficie de las hojas, crecimiento rastrero, o la generación de compuestos bioquímicos que reducen la palatabilidad.

Otras especies de mayor tolerancia al pastoreo se caracterizan por mantener sus puntos de crecimiento cercanos a la superficie del suelo, presentar una alta tasa de regeneración de hojas o contar con yemas adventicias. Un punto que debemos tener en cuenta es que el pastoreo no sólo implica la pérdida de hojas, sino que incluye además el pisoteo, la selección de especies y el aporte de deyecciones en superficies reducidas.

Implicancias de la defoliación

• La recuperación de la planta frente a la defoliación depende de la fase de su ciclo en que se encuentre

• En pasturas perennes hay dos períodos críticos: la entrada al invierno y el rebrote a la salida de esta estación del año. La recuperación depende del nivel de reservas (manejo previo)

• El área foliar remanente debe ser suficiente como para permitir el crecimiento de nuevas hojas

• Las plantas son más susceptibles a la defoliación durante las fases de crecimiento que durante el reposo

• Plantas poco vigorosas (bajas reservas), son más susceptibles a la defoliación que las plantas vigorosas

• Otro factor a considerar es la duración de los períodos de recuperación de las plantas (frecuencia de defoliación)

• Los cambios morfológicos son indicadores de variaciones fisiológicas, por lo cual pueden emplearse como indicadores de manejo

• Cuando quedan expuestos los puntos de crecimiento, aumenta la sensibilidad a factores adversos (heladas, plagas, pastoreo, etc.)

• Si desaparecen los puntos de crecimiento (ápices) se pone en riesgo la supervivencia de la planta

Ecofisiología de plantas forrajeras, Ing. Agr. Cristina Ugarte – INTA

Revista Chacra

A partir de estas premisas se elaboraron una serie de normas que se presentan a continuación.

1.- Forrajes Frescos

1.1.- Extracción de la muestra

En forrajes frescos para pastoreo, se aconseja cortar “siempre” con la mano (método hand-placking) a la misma altura que estén pastoreando los animales para incluir la proporción justa de las especies que integran la pastura polifítica, verdeo de invierno o verano que es consumido. Cuando se busca determinar la calidad del forraje “nunca” se debe cortar con tijera o cuchillo a la altura de 10 cm; esto se hace exclusivamente cuando se desea determinar producción de pasto (kg MS/ha).

Se recomienda dejar que los animales consuman, primero, varias franjas (3 o 4) y se debe observar la composición del forraje remanente (tallos y hojas) que queda en el potrero sin comer. Posteriormente, se muestrea con la mano simulando la boca del animal dejando el mismo remanente que ellos. De esta manera se podrá saber la calidad del forraje que están comiendo los animales. En caso de que se necesite saber aproximadamente la calidad antes que entren los animales a comer, se debe cortar el pasto dejando un remanente en función del estado de desarrollo del mismo, pero nunca inferior a 10 cm del suelo.

En cambio, si se desea conocer la calidad del forraje cuyo destino será un silaje de planta entera, rollos o fardos (henos), se debe cortar a la altura que cortará la máquina.

El número de submuestras dependerá de la uniformidad del cultivo. El tamaño de la submuestra es la correspondiente al aro (56 cm de diámetro, que equivale a 1 m2) o similar.

Verdeos y pasturas monofíticas (una sola especie): cuando el potrero es uniforme, basta con extraer 5 a 15 submuestras/potrero, dependiendo del tamaño del mismo. En cambio, si es desuniforme por heces, orina, tipo de suelo, etc, hay que muestrear en forma proporcional a estas irregularidades, extrayendo por lo menos 5 submuestras por sector que sea representativo en el total del potrero.

En todos los casos, se debe hacer un «pool» y se toma de éste, alrededor de 1/2 kg de pasto verde, luego se pone en bolsas de polietileno, se elimina el aire y se debe evitar exponerlas al sol. Siempre se debe identificar bien el potrero, el cultivo, variedad, fertilización si la hubo y cualquier otro dato que pueda ser útil. A la bolsa con el pasto, conviene mantenerla en frío hasta llegar al laboratorio.

Pasturas polifíticas (+de una especie): es importante estimar la proporción visual de las distintas especies,  y además, cuando éstas no estén  distribuidas en forma uniforme en el potrero, se debe muestrear siguiendo las recomendaciones citadas en el punto anterior para sectores desuniformes.

Ejemplo:

Potrero cuya superficie total es 30 ha, formado por 60% de 1/2 loma y 40 % de loma, y se establece  como ejemplo tomar 10 submuestras.

1/2 loma: 10 x 0.60 = 6

Loma: 10 x 0.40 = 4

Total de submuestras: 10

De este total de submuestras (10) se mezcla bien y se cuartea (dividir en 4 partes) y es toma una parte de c/u para confeccionar la muestra única (pool) de 1/2 kg de pasto verde.

En ambos casos, se puede secar cada muestra en estufa a 60º C (no se puede usar microondas). El tamaño o cantidad de muestra para analizar es suficiente con 100 a 150 gr peso seco/muestra. En este caso, es necesario pesar el material tal cual (peso fresco) y luego se lleva a estufa (60°C) hasta peso constante (peso en seco). Finalmente, el dato de porcentaje de materia seca se obtiene por un simple cálculo.

1.2.- Determinaciones aconsejada a los Forrajes Frescos

– Materia seca (MS)

– Digestibilidad de la MS «in vitro» (DIVMS)

– Proteína bruta (PB)

– Proteína bruta soluble (PBS)

– Carbohidratos no estructurales solubles (CNES)

– Almidón

– Fibra detergente neutra (FDN)

– Fibra detergente ácido (FDA)

2.- Forrajes Conservados (silajes, henos, henolajes, etc.)

2.1.-Extracción de la muestra

Cuando se desea analizar un Silaje de planta entera (silos bolsas o silos puente o bunker) es conveniente que hayan comido unos metros del silaje, de esa forma se puede extraer submuestras de distintos sectores del mismo, sin considerar los bordes donde normalmente está deteriorada su calidad.

En caso de ser un rollo o fardo (henos) o henolaje, también, se muestrea en el “corazón” del mismo, evitando los bordes.

La cantidad de submuestras dependerá de las características propias de cada reservas, variando de 5 a 10 submuestras por lote (por corte o cultivo) que presente similares características, y de este «pool» (previo cuarteo) hacer 1 muestra de alrededor de  200 a 300 gr (heno) o 1 kg (silajes «tal cual»), colocándola en bolsas de polietileno (sin aire).

Para el caso de los silajes o henolajes, se deben llevar las bolsas plásticas, previa identificación, a la heladera (-7°c) o a un freezer (-1°c) dependiendo del tiempo que se demore en llevarlas al laboratorio para su análisis.

Cuando se disponga de 2 o más grupos de rollos de calidades «aparentemente» distintas, se debe repetir el procedimiento arriba señalado para cada grupo. Se puede usar caladores con un diámetro interno d 3/8 pulgadas (aprox. 10 mm) con buen filo y de 40 -45 cm de largo o en caso contrario, tomar con la mano una porción de pasto, según las recomendaciones citadas anteriormente.

En el caso de los rollos, cada muestra se puede secar a 60ºC hasta peso constante. En cambio, los silajes y henolajes no se aconseja secar previamente la muestra porque sería imposible hacer 2 determinaciones claves (pH y NH3/N total). Para ello, se requiere que las muestras tanto de silaje como de henolaje, se congelen en un freezer y se pongan en cajas de tergopol con refrigerantes hasta llegar al laboratorio.

2.2.- Determinaciones

– MS / DIVMS / PB / Almidón / Carbohidratos no estructurales solubles (CNES) / pH (silaje y henolaje exclusivamente) / NH3/N total (silaje y henolaje exclusivamente) / FDN / FDA

3.- Concentrados (granos, pellets o expeller, etc.)

3.1.- Extracción de la muestra

En estos casos, basta con colocar en bolsas de polietileno una muestra representativa del lote de alrededor de 200 a 300 gr. Si están en bolsas, muestrear por lo menos el 15 al 20% de ellas.

3.2.- Determinaciones

MS / DIVMS / PB / Almidón / CNES / FDN / FDA

4.- Observaciones

En todos los casos, es aconsejable acompañar a la muestra con la mayor información del cultivo posible, las lluvias caídas en el año, condiciones climáticas imperantes, las características del cultivo (altura, color de mismo, estado de madurez, etc). Incluso, altura de corte y si se puede determinar, para el caso de pasturas polifíticas, las proporciones de las distintas especies.

De los cuidados que se tenga al hacer el muestreo dependerá que los resultados de los análisis de laboratorio reflejen la calidad nutricional del alimento que están consumiendo los animales, de ahí la importancia que se tomen bien las muestras.

Aníbal Fernández Mayer; Jorge Carrizo; Héctor Pelta